Probe qPCR Mix

Thermal Cycler Dice Real Time System III、IIおよびLiteを用いる場合の操作方法

  1. 下記に示すPCR反応液を調製する。

    <1反応あたり>
    試薬使用量最終濃度
    Probe qPCR Mix(2×)12.5 μl
    PCR Forward Primer (10 μM)0.5 μl0.2 μM*1
    PCR Reverse Primer (10 μM)0.5 μl0.2 μM*1
    プローブ1 μl*2
    template2 μl*3
    滅菌精製水8.5 μl 

    Total25 μl 
    *1 最終プライマー濃度は0.2 μMで良い結果が得られる場合が多いが、反応性に問題がある時は0.1~1.0 μMの範囲で最適な濃度を検討すると良い。
    *2 プローブ濃度は、使用するリアルタイムPCR装置の機種やプローブの蛍光標識物質により異なる。プローブ添付のデータシートを参考に添加量を検討する。Thermal Cycler Dice Real Time System III、IIおよびLiteの場合、通常、最終濃度0.1~0.5 μMの範囲で検討する。
    *3 template溶液中に存在するターゲットのコピー数により異なる。段階希釈して適当な添加量を検討する。DNA template 100 ng以下を用いることが望ましい。また、RT-PCRでcDNA (RT反応液) をtemplateとして添加する場合は、PCR反応液容量の10%以下になるようにする。


  2. 反応を開始する。
    PCRは、下記のシャトルPCR標準プロトコールで行うことをお勧めする。アニーリング/伸長時間は20~30秒に設定できるが、より安定した結果が得られる30秒で、まずお試しください。(「PCR反応条件について」を参照)。
 シャトルPCR標準プロトコール

  Hold(初期変性)
    Cycle:1
    95℃ 30秒
  2 Step PCR
    Cycle:40
    95℃  5秒
    60℃  30秒


  1. 反応終了後、解析を行う。
    反応終了後、増幅曲線を確認し、定量を行う場合は検量線を作成する。
    *解析方法は、Thermal Cycler Dice Real Time System III、IIおよびLiteの取扱説明書を参照してください。

<PCR反応条件について>

初期変性

ステップ 温度 時間 検出 コメント
初期変性95℃ 30秒 OFF初期変性は通常95℃、30秒で十分である。環状プラスミドやゲノムDNAなど変性しにくい鋳型でもこの条件で良好に反応できることが多い。鋳型の状態によっては、95℃、1~2分程度に延長することが可能だが、時間が長すぎると酵素の失活を招く怖れがあるので、2分以上の条件は推奨しない。

シャトルPCR(2ステップPCR)     サイクル数:30~45サイクル

ステップ 温度 時間 検出 コメント
変性95℃3~5秒OFFリアルタイムPCRの増幅サイズは一般的に300 bp以下なので、95℃で3~5秒程度でよい。
アニーリング
/伸長
56~64℃20~30秒ONまずは標準プロトコールを試す。反応条件の至適化を行う場合には、56℃~64℃の範囲で検討する。反応性が悪い時は、このステップの時間を延ばすと改善する場合がある。

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