| RR370S | TaKaRa Ex Premier DNA Polymerase (2×) | 1 ml | 
| RR370A | TaKaRa Ex Premier DNA Polymerase (2×) | 1 ml×5 | 
| RR371S | TaKaRa Ex Premier DNA Polymerase Dye plus (2×) | 1 ml | 
| RR371A | TaKaRa Ex Premier DNA Polymerase Dye plus (2×) | 1 ml×5 | 
| TaKaRa Ex Premier DNA Polymerase(2×) | 25 μl(final conc. 1×) | 
| Primer 1 | 10~15 pmol(final conc. 0.2~0.3 μM) | 
| Primer 2 | 10~15 pmol(final conc. 0.2~0.3 μM) | 
| Template | 10 pg ~ 750 ng(データシートの「推奨鋳型量」を参照) | 
| 滅菌精製水 | Up to 50 μl | 
| 94℃ | 1 min.*1 | ||
| 98℃ 55~60℃ 68℃  | 10 sec. 15 sec. 30 sec./kb*2  | 
30 cycles | 
| 94℃ | 1 min.*1 | ||
| 98℃ 68℃  | 10 sec. 30 sec./kb*2  | 
30 cycles | 

| *3 | 本製品はLysis Buffer for PCR(製品コード 9170A)に含まれます。 | 
| *4 | 保存する場合は、上清を別のチューブに移して-20℃以下で保存してください。 PCRに使用する前には室温に戻し、沈殿物がないことを確認してください。  | 
    
<マウス尾抽出液からの増幅(図A)>
<マウス脳抽出液からの増幅(図B)>
<マウスEDTA血液抽出液からの増幅(図C)>
ターゲット:mouse Raver2(1,100 bp)
使用したライセート量:| ・ | 尾、脳(図A、B) | ※25 µl反応系で実施 | |
| レーン1: | 0.4 µl | ||
| レーン2: | 1.0 µl | ||
| レーン3: | 2.5 µl | ||
| ・ | EDTA血液(図C) | ※50 µl反応系で実施 | |
| レーン1: | 1.0 µl | ||
| レーン2: | 2.0 µl | ||
| 94℃ | 1 | min. | ||
| ↓ | ||||
| 98℃ | 10 | sec. | 30 cycles | |
| 60℃ | 15 | sec. | ||
| 68℃ | 1 | min. | ||
※反応系へのライセートの持ち込み量が増えると、PCR反応に阻害がかかる場合があります。
				ユーザー様インタビュー&実施例:TaKaRa Ex Premier™ DNA Polymeraseを使用したマウスジェノタイピングの効率化
				ユーザー様実施例1:遺伝子欠損マウスのジェノタイピング
				ユーザー様実施例2:HDAC6のクローニング
				ユーザー様実施例3:遺伝子XとYのクローニング
				ユーザー様実施例4:アサガオ(Ipomoea nil)遺伝子Xのクローニング
				ユーザー様実施例5:食品中の小麦由来DNAの検出
				ユーザー様実施例6:トランスジェニックマウスのGenotyping
				ユーザー様実施例7:水産物のDNA種判別技術
				クルードサンプル(マウス各組織粗抽出液)からのPCR増幅
				In-Fusionクローニングキットと組み合わせた簡単・効率的なクローニング
				長鎖(10 kb)増幅に対する成功率
				GCリッチ/ATリッチターゲットに対する反応性
				長鎖ターゲット(10~32 kb)の増幅
				タカラバイオ主要PCR酵素および他社PCR酵素 正確性の比較
			
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		PCR酵素ユーザーズボイス 一挙ご紹介!
		新PCR酵素「TaKaRa Ex Premier™」評価アンケート 結果発表!
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