反応用バッファー添付
Loading Buffer添付
保存
－20℃
濃度
10 U/μl
添付・活性測定Buffer
H
反応温度
37℃
活性測定基質
λDNA
起源
Streptomyces caespitosus
Star活性
Mn2＋存在、アルカリpH、低イオン強度下では、認識配列がゆるむことがある。
使用上の注意
本酵素は希釈に不安定なため、原液で使用すること。
反応液にBSAを終濃度0.01％添加すると、37℃反応ではあまり効果はないが、30℃反応では相対活性120％、25℃反応では240％程度上昇する。なお、反応液にBSAを添加しないと、25℃反応でも活性は上昇しない。
反応液にBSAを終濃度0.01％添加すると、37℃反応ではあまり効果はないが、30℃反応では相対活性120％、25℃反応では240％程度上昇する。なお、反応液にBSAを添加しないと、25℃反応でも活性は上昇しない。
TaKaRa制限酵素 認識配列検索ツール「Takara Cut-Site Navigator」
制限酵素の使用に際して
Universal Buffer・Basal Bufferによる制限酵素活性表示システム
制限酵素Genome DNA Analysis Grade
Ligation-Recutting効率品質規格
制限酵素活性に対するメチル化の影響
制限酵素のStar活性
pBR322、pUC19の完全分解に必要な反応時間
pKF3の完全分解に必要な反応時間
16時間反応での完全分解に必要な酵素量
長時間制限酵素を反応させたときの残存活性
各種失活処理後の残存活性
Basal Buffer組成
Basal Bufferの塩濃度が酵素活性に及ぼす影響
制限酵素形状一覧
制限酵素一覧表
Isoschizomer一覧表
認識部位による制限酵素の分類表
Ligation & Recuttingのための制限酵素一覧表
制限酵素切断部位数一覧表
pKF3 DNA（2246 bp）の制限酵素切断地図
pUC19 DNA（2686 bp）の制限酵素切断地図
pUC119 DNA（3162 bp）の制限酵素切断地図
pBR322 DNA（4361 bp）の制限酵素切断地図
ColE1 DNA（6646 bp）の制限酵素切断地図
M13 mp18 DNA（7249 bp）の制限酵素切断地図
λDNA（48502 bp）の制限酵素切断地図
制限酵素の活性の定義、純度検定、保存、添付Bufferについて
使用文献・参考文献
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